低血清培養條件

　　采用含0.5%-2%胎牛血清的培養基，可顯著抑制細胞活化標志物α-SMA的表達。實驗數據顯示，與10%血清組相比，低血清組細胞活化率降低60%-70%，且脂滴保留更完整。

　　維生素A代謝干預

　　補充視黃醇（10μM）或全反式維甲酸（1μM），可維持細胞內維生素A儲存功能。研究證實，視黃醇處理組細胞脂滴數量較未處理組增加40%，且α-SMA表達量下降50%。

　　細胞外基質模擬

　　在培養皿表面包被層粘連蛋白（5μg/cm²）或膠原IV（2μg/cm²），可模擬肝臟Disse間隙微環境。此條件下，細胞伸展面積減少30%，突起數量降低50%，更接近靜息態形態。

　　抑制性細胞因子添加

　　外源性添加HGF（20ng/mL）或BMP-7（50ng/mL），可通過激活Smad7信號通路抑制TGF-β1誘導的活化。聯合使用HGF+BMP-7時，活化抑制率可達85%。

　　二、活化誘導策略

　　促纖維化因子刺激

　　TGF-β1（5ng/mL）處理24小時可誘導α-SMA表達量上升10倍，且細胞收縮性增強3倍。PDGF-BB（10ng/mL）則通過促進細胞增殖，使活化細胞數量增加5-8倍。

　　機械應力模擬

　　采用柔性基底拉伸系統（10%應變，0.5Hz頻率）處理細胞，可激活YAP/TAZ通路，導致α-SMA表達量上升6倍，且細胞排列方向與應力方向一致。

　　代謝重編程干預

　　以葡萄糖（25mM）替代培養基中的丙酮酸，可誘導細胞從氧化磷酸化轉向糖酵解代謝。此條件下，細胞活化標志物表達量上升3倍，且ECM分泌量增加50%。

　　三維培養體系構建

　　使用Matrigel（5mg/mL）或膠原凝膠（2mg/mL）進行三維培養，可模擬體內纖維化微環境。三維培養組細胞活化率較二維培養組高40%，且膠原合成能力增強3倍。